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造血干细胞移植治疗多发性硬化

2015-12-29 放心医苑网 A +

造血干细胞移植治疗多发性硬化

中华神经科杂志2000年第3期第33卷综述

作者:王湘庆戚晓昆许贤豪

单位:王湘庆(100037北京海军总医院神经内科);戚晓昆(100037北京海军总医院神经内科);许贤豪(卫生部北京医院神经内科)

多发性硬化(multiplesclerosis,ms)是一种自身免疫性疾病,病因尚不完全清楚。研究证明,ms主要是由t细胞介导的中枢神经脱髓鞘病[1]。目前,常规治疗方法包括激素、免疫抑制剂、干扰素-β、放射治疗等,仅能延长疾病的缓解期。近年来发现造血干细胞移植(hsct)治疗血液病的同时所合并的自身免疫性疾病得到缓解[2,3]。本文对近年hsct治疗ms进展作一综述。

一、动物实验

用豚鼠髓鞘碱性蛋白(mbp)或含脂质蛋白(plp)片段及完全福氏佐剂免疫sjl/j小鼠或buffalo大鼠可造成ms的动物模型[4,5],即实验性自身免疫性脑脊髓炎(eae)。14d后出现神经系统症状,与人类复发-缓解型ms表现一致。造血干细胞移植方式共8种,其方法及治疗后自然复发和免疫诱导复发情况详见表1[5-8]。

表1造血干细胞移植方式及治疗后eae复发情况

移植方式自然复发诱导复发例数总例数%例数总例数%未行骨髓移植组16017591708285sbm组248229317144psabm组113730263672sbm+tcd组31533---psabm+tcd组6163891560sbm+spl组4113651146psabm+spl组13149371164abm组348684617abm+tcd组01300130sbm:同基因骨髓移植;psabm:假性同基因骨髓移植;sbm+spl:同基因骨髓及脾脏细胞移植;psabm+spl:假性同基因及脾脏细胞移植;abm:异基因骨髓移植;tcd:t细胞去除对中-重度瘫痪的eae大鼠进行同基因hsct移植,几天后所有大鼠症状均完全缓解,而未治疗组大鼠瘫痪症状仍持续2~3周。sbm组,即干细胞来自同基因健康大鼠,治疗后自然复发率及诱导复发率均显著降低,此降低并不是因为移植后免疫缺陷所致,因实验证实正常buffalo大鼠sbm后,用lpl免疫诱发,其中90%发生eae[9]。psabm组,即干细胞来自同基因患病大鼠,同样是一种有效的方法,自然复发率与sbm相同,但诱导复发率较高。psabm类似于临床的自体hsct,死亡率低及耐受性好,临床值得推广。psabm+spl的复发率与对照组相同,故推测同基因移植中残留淋巴细胞是移植后复发的关键,因此移植物中t细胞去除是必须的。

异基因移植后无论自然复发或诱导复发均显著降低,较同基因移植疗效更好,可能与亚临床移植物抗宿主反应有关。但异基因移植死亡率高,移植后100d内可高达20%(同基因移植仅为1%~3%),限制了其临床应用。

二、hsct治疗ms的现状

1997年,fassas等[10]对15例进展型ms进行了自体外周血干细胞移植。其中男8例,女7例,平均年龄34岁(24~54岁)。8例为原发进展型ms,7例为继发进展型ms。移植前均有严重肢体残疾,残疾状态扩展评分表(expandeddisabilitystatusscale,edss)评分平均6.0分(5.0~7.5分),临时神经症状测定量表(scrippsneurologicratingscale,snrs)评分平均42分(33~62分)。均经各种治疗无效。病情处于进展状态平均6年(2~17年)。干细胞动员采用环磷酰胺(ctx)和粒细胞生长因子(g-csf)/粒-巨细胞生长因子(gm-csf)。因无特异性抗体未进行t细胞去除。随访6~18个月,7例edss评分改善,15例snrs评分改善。1例于移植后3个月时病情恶化,2例分别在移植后3个月、9个月复发。

1998年,burt等[11]用hsct治疗3例进展型ms,病例选择与fassas相同,干细胞动员单用g-csf;预处理用ctx+全身照射(tbi)。移植物用单克隆抗体进行t细胞去除。平均随访8个月(6~10个月),3例临床神经症状均明显改善,mri证实原有脑白质内病灶范围缩小、无新病灶出现,且钆强化现象消失。随访期间均无复发和恶化。

三、hsct治疗机制

首先,预处理时大剂量免疫抑制剂的应用和(或)tbi在短期缓解中起作用。ms的发病需要多种成熟血细胞参与抗原的识别、炎性介质的释放及组织的破坏,化疗药物的应用使其功能发生障碍,甚至凋亡,从而抑制了炎症反应,但缓解期维持时间短。

其次,hsct后免疫重建一般发生于移植后半年[12]。包括细胞免疫和体液免疫的重建:cd4/cd8淋巴细胞比例倒置、自然抑制细胞增多、t细胞池改变等。可以认为免疫重建是长期缓解的机理。以类风湿关节炎(ra)为例,单卵双生同患ra的比例约为15%,说明ra致病不是由基因完全控制,而是有一定的随机性,hsct后仍可能有约15%的机率复发,但已破坏的关节在免疫重建中提供新的抗原,能通过负选择产生免疫耐受而减少复发。亦有人认为异体移植可产生有益的移植物抗宿主排斥反应(gvhd)[13],在疾病缓解中起一定作用。ikehara[7]认为只有异基因干细胞移植才能使疾病完全缓解。

四、病例的选择

多发性硬化患者若无活动受限,预后较好,10年生存率可达94%;而出现肢体活动明显受限,如需依赖轮椅活动者,10年死亡率可高达50%~70%,故此类患者应选用更为积极的治疗方法。mri钆增强可反映血脑屏障破坏,提示该处有急性炎症反应,是ms进展的标志[14]。

病例选择的主要依据:①年龄小于55岁;②静脉用甲基氢化泼尼松(1g/d,连用3d)不能阻止疾病进展;③edss评分在5~8分,且继续增长(edss评分低于5.5分者,每12个月增长1.5分;edss评分高于6分者,每12个月增长1分);④mri钆增强阳性(非必需条件)[15]。目前,认为hsct不适合用于治疗复发-缓解型ms,因为,其预后良好且自然缓解的病程影响评分。

五、自体外周血干细胞移植步骤及方法

干细胞的动员:外周血干细胞仅占外周血有核细胞的0.03%,即3个/μl,故需动员才能采集到足够的干细胞。方法有3种:单用免疫抑制剂(ctx4g/m21次)、单用g-csf/gm-csf(10μl·kg-1.d-1)、两者合用。ctx的使用有导致骨髓异常增生综合征、白血病及继发性肿瘤等副作用,故现在多采用单纯g-csf方法动员。但联合应用可获得更高产量的干细胞,尤其适于长期服烷化剂治疗者。

干细胞的收集、检测及冻存:可采用细胞分离仪收集单个核细胞,再采用免疫磁珠或亲和素-生物素免疫吸附柱等技术富集cd34+细胞(即造血干细胞及祖细胞),去除成熟的t、b细胞。检测方式可用分子生物学方法或流式细胞仪技术,cd34+细胞总数需>2×106/kg;或用干细胞体外培养,生长的集落数需>1×105/kg。同时t/b细胞应<1×105/kg。用含二甲基亚砜的真核细胞冻存液在液氮或-80℃低温冰箱中长期保存。

干细胞回输前预处理:即大剂量化疗/tbi[5,6]。化疗应选用最大效果,同时对已受损的器官毒性小的方案。推荐有3种方案:①ctx(60mg·kg-1.d-1,干细胞回输前第6d及第5d应用)+tbi(300cgy/d干细胞回输前第4d至回输前1d应用)+泼尼松(1g/d回输前第4d至回输前1d应用);②beam联合方案(亚硝基脲氮芥300mg/m2,回输前第6d应用;鬼臼毒素200mg/m2,每日2次,回输前第5d应用;阿糖胞苷200mg/m2,回输前第5d至回输前第2d应用、马法兰140mg/m2,回输前第1d用);③ctx+抗胸腺球蛋白。

回输及回输后处理:冻存的干细胞于38~40℃快速冻融,后回输,依赖干细胞的归巢现象到达骨髓生长。为防止gvhd,同种异体移植需用1~2年免疫抑制剂,主要为环胞霉素a(csa)及氨甲喋呤,自体hsct后csa用6个月即可。

hsct是治疗ms的一个新方法,目前,尚存在许多有待解决的问题,如干细胞动员中g-csf的应用,是否会使ms加重;hsct后缓解及复发确切原因不明确,如何指导hsct的完善;病人的选择及疗效评估的相应标准尚未建立;hsct预后难以估计,临床试验难以取得患者及家属的同意等。因多数ms患者为复发、缓解性的迁延病程,但hsct的疗效对某一具体ms患者来说并不肯定,更重要的是有一定死亡率,所以应慎用。但对一些慢性进展性且已用其他治疗无效的病例,此法不失为可供选择的治疗方法之一。随着hsct治疗ms病例的积累,有助于对此病的进一步理解及治疗。

参考文献

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3,mcallisterlp,beattypg,roses.allogeneicbonemarrowtransplantationforchronicmyelogenousleukemiainapatientwithms.bonemarrowtransplant,1997,19:395-397.

4,karussis,vourka-karussisu,lehmannd,etal.preventionandreversalofadoptivelytransferred,chronicrelapsingexperimentalautoimmuneencephalomyelitiswithasinglehighdosecytoreductivetreatmentfollowedbysyngeneicbonemarrowtransplantation.jclininvest,1993,92:765-772.

5,vangelderm,vanbekkumdw.effectivetreatmentofrelapsingexperimentalautoimmuneencephalomyelitiswithpseudoautologousbonemarrowtransplantation.bonemarrowtransplant,1996,18:1029-1034.

6,vangelderm,vanbekkumdw.treatmentofrelapsingexperimentalautoimmuneencephalomyelitisinratswithallogeneicbonemarrowtransplantationfromaresistantstrain.bonemarrowtransplant,1995,16:343-351.

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8,burtrk,padillaj,begolkaws,etal.effectofdiseasestageonclinicaloutcomeaftersyngeneicbonemarrowtransplantationforrelapsingeae.blood,1998,91:2609-2616.

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10,fassasa,anagnostopoulosa,kazisa,etal.peripheralbloodstemcelltransplantationinthetreatmentofprogressivemultiplesclerosis:firstresultsofapilotstudy.bonemarrowtransplant,1997,20:631-638.

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12,tyndalla,gratwohla.bloodandmarrowstemcelltransplantsinautoimmunedisease:aconsensusreportwrittenonbehalfoftheeuropeanleagueagainstrheumatism(eular)andtheeuropeangroupforbloodandmarrowtransplantation(ebmt).bonemarrowtransplant,1997,19:634-635.

13,nashra,mesweeneypa,storbr,etal.developmentofaprotocolforallogeneicmarrowtransplantationforseveresystemicsclerosisparadigmforautoimmunedisease.jrheumatol,1997,24suppl48:72-78.

14,francisgs,evansac,aronolddl.neuroimaginginmultiplesclerosis.neurolclin,1995,13:147-171.

15,burtrk,burnswh,millersd.bonemarrowtransplantationformultiplesclerosis:returningtopandora′sbox.immunoltoday,1997,12:559-561.

(收稿日期:1999-08-12)

(责任编辑:jbwq)

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